UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD PILOTO DE ODONTOLOGÍA TRABAJO DE GRADUACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE ODONTOLOGO TEMA: Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad Estatal de Guayaquil. AUTOR Gabriela Decire Villafuerte Abad Tutor: Dr. Luis Játiva Guayaquil, Junio 2012 CERTIFICACION DE TUTORES En calidad de tutor del trabajo de investigación: Nombrados por el Honorable Consejo Directivo de la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad de Guayaquil CERTIFICAMOS Que hemos analizado el trabajo de graduación como requisito previo para optar por el Titulo de tercer nivel de Odontólogo El trabajo de graduación se refiere a: EL TEMA “Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto De Odontología De la Universidad Estatal de Guayaquil.” Presentado por: Villafuerte Abad Gabriela Decire 092224615-2 Tutores Dr. Luis Játiva Tutor Científico Dr. Luis Játiva Tutor Metodológico Dr. Washington Escudero Doltz Decano Guayaquil, Junio 2012 I AUTORIA Los criterios y hallazgos de este trabajo responden a propiedad intelectual de la autora. Gabriela Decire Villafuerte Abad C.I.0922246152 II AGRADECIMIENTO Agradezco en primer lugar a Dios por haberme dado la fuerza, perseverancia y constancia para poder alcanzar esta meta, siguiendo agradezco a mi familia quien siempre ha estado conmigo brindándome su comprensión, paciencia y apoyo incondicional en todos los aspectos de mi vida permitiéndome lograr los diferentes objetivos que me eh propuesto hasta el momento. También debo agradecer a los diferentes catedráticos de la Facultad Piloto de Odontología que contribuyeran en mi formación profesional y personal a través de la transmisión de conocimientos y experiencias con las que enriquecieron mi vida y con las que me han preparado para poder llevar por el camino de la ética mi vida profesional Y por último un especial agradecimiento a mi tutor de tesis el Dr. Luis Játiva por su generosidad al brindarme la oportunidad de recurrir a su capacidad y experiencia científica y profesional en un marco de confianza, afecto y amistad, fundamentales para la concreción de este trabajo. III DEDICATORIA Dedico el esfuerzo a Dios por su bendición lograda a mis padres Tanya Abad Baloy y José Herrera Loy quienes desde temprana edad me inculcaron el valor del trabajo duro y de superarse día a día así como los diferentes valores humanos bajo los cuales dirijo mi vida, también dedico el esfuerzo a mis hermanos Chisthian y Yoise quienes han estado conmigo a lo largo de este camino de formación profesional bridándome su apoyo constante e incondicional en todo momento y sobre todo a una personita muy especial que es mi vida y mi todo mi hija Amy Badillo que gracias a ella en los momentos cuando eh querido desvanecer con su sonrisa y tierna mirada me dicen que continúe que ella estará siempre ahí para apoyarme incondicionalmente. IV INDICE GENERAL Contenidos pág. Caratula Carta de Aceptación de los tutores……………………………….…………. I Autoría……………………………………………………………..….…………. II Agradecimiento………………………………………………………….…….. III Dedicatoria……………………………………………………………….…….. IV Índice General…………………………………………………………….…… INTRODUCCIÓN ……………………………………………………….…… 1 CAPITULO I 1. EL PROBLEMA………………………………………………….……….…. 2 1.1 Planteamiento del problema……………………………………….….. 2 1.2 Preguntas de investigación………………………………….………… 2 1.3 Objetivos……………….…………………………………………..…….. 3 1.3.1 Objetivo General…………………….…………………………… 3 1.3.2 Objetivos Específicos…….……………………………………… 3 1.4 Justificación……………………………………………………………… 3 1.5 Viabilidad…………………………………………………………………. 3 CAPITULO II 2 .MARCO TEORICO………………………………………………………….. 4 Antecedentes…………………………………………………………………… 4 2.1 Fundamentos teóricos…………………………………………………. 5 2.1.1 Bioseguridad………..…………………………………………….. 5 2.1.2 Los principios de bioseguridad….……………………………. 6 2.1.2.1 Universalidad…………………………………………. 6 2.1.2.2 Uso de barreras……………………………………….. 6 2.1.2.3 Medios de eliminación de material contaminado.. 6 2.1.3 Recomendaciones de bioseguridad……..………………….… 6 2.1.4 Mecanismos de infección………………….…………………… 7 2.1.5 Precauciones en la consulta del paciente………….………... 8 2.1.5.1 En la historia clínica………………………………….. 8 2.1.5.2 En el examen clínico……………………………. 8 V 2.1.6 Recomendaciones para el tratamiento de paciente………... 8 2.1.6.1 Lavado de manos……………………….…………….. 8 2.1.6.2 Técnica del lavado de manos………………………. 9 2.1.6.3 Guantes………………………………………………… 9 2.1.6.4 Mascarillas……………………………………………… 10 2.1.6.5 Protectores oculares…….…………………………… 11 2.1.6.6.- Vestimenta del profesional………………………… 11 2.1.6.7.- Esterilización y desinfección de, materiales………11 2.1.7 Recomendaciones durante la atención en el centro odontológico………………………………..………… 13 2.1.8 Control ambiental…………….………………………………….. 15 2.1.8.1 Cubiertas descartables……………………………….. 15 2.1.8.2 Eliminación de desechos……………………………. 15 2.1.9 Esterilización……….……………………………………………. 16 2.1.9.1 Aseguran una esterilización apropiada……………. 16 2.1.9.2 Métodos de esterilización ……………………………. 16 2.1.10 Clasificación de la esterilización de instrumentos …….. 17 2.2.10.1 Equipo crucial………………………………………… 17 2.2.10.2 Materiales semicruciales……………………………. 17 2.2.10.3 Instrumentos no cruciales…………………………… 18 2.1.10.4 Preparación para la esterilización………….……… 18 2.1.11 Desinfección……………………………………………….…… 19 2.1.11.1 Preparación de glutaraldehido ……………………. 20 2.1.11.2 Dióxido de cloro…………………………………….. 20 2.1.11.3 Hipoclorito de sodio………………………………… 21 2.1.11.4 Yodóforos ……………………………………………. 21 2.1.11.5 Alcoholes ……………………………………………. 22 2.1.11.6 Compuestos de amonio cuartenario……………… 22 2.1.12 Técnicas de desinfección……….……………………………. 23 2.1.12.1 Desinfección por inmersión……………………….. 23 2.1.12.2 Desinfección de la superficie……………………… 23 2.1.12.3 Descontaminación de unidades………………….. 23 VI 2.1.12.4 Requisitos del desinfectante idea………………… 23 2.1.13 Asepsia y Antisepsia…………….……………………………. 24 2.1.13.1 Asepsia………………………………………………… 24 2.1.13.2 Antisepsia…………………………………………….. 24 2.1.14 Protocolo preoperatorio………..…………………………….. 25 2.1.14.1 Limpieza y desinfección del instrumental………. 26 2.1.14. 2 Esterilización……………………………………….. 26 2.1.14.3 Tipo de relleno……………………………………… 26 2.1.14.4 Temperatura………………………………………….. 26 2.1.14.5 Tiempo………………………………………………… 27 2.1.15 Protocolo postoperatorio…………..…………………………. 27 2.1.15.1 Esterilización y reesterilización del instrumental. materiales endodónticos…………………………….. 27 2.1.15.2 Cadena o protocolo aséptico……………………... 28 2.1.15.3 Barreras físicas………………………………………. 29 2.1.16 Desinfección del conducto radicular………………..……… 29 2.1.16.1 Trauma………………………………………….……. 29 2.1.16.2 Tejido desvitalizado………………………….……… 29 2.1.16.3 Espacios muertos………………………………….… .29 2.1.16.4 Acumulación de exudado…….…….………………. 29 2.1.17 Normas de bioseguridad para el área de odontología….. 30 2.1.18 Recomendaciones prácticas para desarrollar vinculadas a la asistencia de pacientes………………………………….. 32 2.1.18.1 Descartadores……………………………………….. 32 2.1.18.2 Material de curaciones……………………………… 33 2.1.18.3 Limpieza diaria……….………………………………. 33 2.1.18.4 Clasificación de materiales……………………….… 33 2.1.19 Criterios para desinfección descontaminación, y desinfección……………..……………………………………. 35 2.1.19.1 Descontaminación………………………………….. 35 2.1.19.2 Limpieza……………………………………………… 35 2.1.19.3 Desinfección química…...………………………….. 35 VII 2.1.20 Flora microbiana endodóntica (microbiota)…….………… 36 2.1.21 Patogénesis pulpar y periapical……………….……………. 37 2.1.21.1 Lipopolisacáridos…………………………………… 37 2.1.21.2 Enzimas………………………………………………. 37 2.1.21.3 Vesículas extracelulares……………………………. 37 2.1.22 Microbiología de las enfermedades periapicales ……….. 38 2.1.23 Antibióticos o antimicrobianos............................................. 40 2.1.23.1 Qué antibiótico prescribir........................................ 40 2.1.23.2 Infecciones incipientes a moderadas….………… 41 2.1.23.3 Infecciones severas odontogénicas.............. ……. 42 2.2 Elaboración de Hipótesis................................................................. 43 2.3 Identificación de las variables…….................................................... 43 2.4 Operacionalización de las variables................................................ 44 CAPITULO III 3. METODOLOGÍA……………………………………………………………. 45 3.1Lugar de la investigación……………………………………………….. 45 3.2Periodo de la investigación…………………………………………….. 45 3.3Recursos Empleados………………………….…………..................... 45 3.3.1 Recursos Humanos……….…………………………………….. 45 3.3.2 Recursos Materiales…………….………………………………. 45 3.4Universo y muestra……………………………………………………… 45 3.4Tipo de investigación……………………………………………………. 46 3.5Diseño de la investigación…………...………………………………… 46 CAPITULO IV 4. CONCLUSIONES Y RECOMENACIONES 4.1 Conclusiones……………………………………………………………. 47 4.2 Recomendaciones……………………………………………………… 47 Bibliografía……………………………………………………………………… 48 Anexo.………………………………………………………………………….. 52 VIII INTRODUCCIÓN. La ausencia de requisitos de bioseguridad inducen a la desconfianza y precaución ya que dada algunas fuentes investigativas se llega a la conclusión que nuestros pacientes se hayan expuestos a una gran variedad de microorganismos que si no tenemos un campo estéril libre de infección y no cumplimos los pasos de bioseguridad nos podemos ver afectado tanto el operador como el paciente. Debido a la existencia de enfermedades infectocontagiosas, no es suficiente someter a esterilización el material utilizado, sino que es necesario controlar este proceso y su efectividad mediante diferentes métodos tales como: uso de indicadores y controles para monitorear la esterilización. Para esto se introduce el concepto llamado 'bioseguridad', tema principal de este trabajo, y que se define como las normas básicas de conducta que debe tener cualquier profesional en el curso de su trabajo diario, cuando se enfrenta a riesgos para su salud y la de la comunidad. Los métodos utilizados en esta investigación son los bibliográficos ya que se dan en libros, internet y páginas web, también usamos el método documental en donde toda información de la investigación se encuentra registradas en el documento. Los resultados que se esperan a futuro son con la finalidad de manejar las normas y procedimientos adecuados para mantener la bioseguridad y asepsia en el campo clínico-odontológico, pero nunca pretende abarcar todo la inmensa extensión del tema, el cual es constantemente modificado por los especialistas y el ministerio de salud. Como objetivo principal es Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad Estatal de Guayaquil. 1 CAPITULO I EL PROBLEMA 1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA Dada algunas fuentes investigativas se llega a la conclusión de diversos autores que la ausencia de requisitos de bioseguridad inciden a la desconfianza y precaución a nuestros pacientes ya que se hayan expuestos a una gran variedad de microorganismos que si no tenemos un campo estéril libre de infecciones nos podemos ver afectado tanto el operador como el paciente. CAUSA VARIABLE INDEPENDIENTE: Ausencia de requisitos de bioseguridad. EFECTO VARIABLE DEPENDIENTE: Nos podemos ver afectados tanto el operador como el paciente. 1.2 PREGUNTAS DE INVESTIGACIÓN. ¿Cuantos métodos de esterilización existen? ¿Cuál de los métodos de esterilización es el más efectivo? ¿Por qué incide la ausencia en la bioseguridad en los pacientes y operadores? ¿Cómo nos podemos ver afectados si no tenemos un campo estéril libre de infecciones? ¿Cómo nos podemos ver afectados en caso de una infección? ¿Cuándo hay desconfianza y precaución en nuestros pacientes? ¿Debemos seguir actualizándonos para llegar a nuevas conclusiones acerca de bioseguridad? ¿Existen microorganismos en un campo aséptico? 2 1.3 OBJJETIVOS 1.3.1 OBJETIVO GENERAL Determinar los procedimientos de bioseguridad adecuados en el tratamiento endodóntico en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad de Guayaquil. 1.3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS Reconocer los perjuicios que se presentarían si no hay un campo estéril. Dar a conocer los diversos métodos de esterilización de asepsia y antisepsia. Emplear un control bacteriológico que detecte o no microorganismos vivos tanto en operadores, pacientes e instrumentales. 1.4 JUSTIFICACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN Se realizara este proyecto no solo con el fin de conocer los diferentes tipos de microorganismos que se encuentran en la cavidad oral sino que también tengamos la necesidad de brindar un campo estéril libre de infección hacia cualquier tratamiento al realizar. Con la posibilidad de que los estudiantes que ingresan a la facultad piloto de odontología obtengan información y material de consulta fundamentada. Dicha investigación que se de en la Universidad de Guayaquil Facultad Piloto de Odontología. 1.5 VIABILIDAD Esta investigación es viable ya que a través de la información que se obtuvo tanto en biblioteca, internet y páginas web dieron como resultado las mismas características. 3 CAPITULO II MARCO TEORICO ANTECEDENTES Durante mucho tiempo la endodoncia ha resultado la importancia de las técnicas de asepsia, al emplear instrumentos esterilizados y soluciones desinfectantes como el hipoclorito de sodio, y aprovechar el efecto del dique de caucho. En el último decenio se han publicado varios artículos en relación con la exposición del personal odontológico a las enfermedades infecciosas. En 1979, Crawford analizó los lineamientos para el control de la contaminación con respecto a la esterilización y desinfección en endodoncia. En fecha más reciente, se han hecho otras recomendaciones para evitar la transmisión de enfermedades infecciosas. Resulta interesante que las mismas advertencias sean aplicables en la actualidad, aunque con muchas adiciones. Las regulaciones de la Occupational Safety and Health Administration (OSHA) han tenido un profundo impacto en el ejercicio de la odontología. Se ha acostumbrado considerar a la hepatitis B como la enfermedad de referencia en el cual se ha basado el control de infecciones. En un consultorio en que se tratan cerca de 20 pacientes por día, cabe esperar que el personal encuentre a un portador activo del virus de la hepatitis B (human immunodeficiency virus, HIV) cada siete días de trabajo. Además es de esperar la exposición a dos pacientes con herpes bucal y a un número desconocido de personas infectadas por el virus de la inmunodeficiencia humana (human immunodeficiency virus, HIV). En general se acepta que la probabilidad de transmisión del virus de la hepatitis B en el consultorio dental es mayor que para el HIV. Enfermedades transmisibles de interés para el dentista. 4 2.1 FUNDAMENTOS TEORICOS 2.1.1 BIOSEGURIDAD CONCEPTO: Es el conjunto de medidas preventivas que tienen como objeto proteger la salud y seguridad personal de los profesionales de salud y pacientes frente a los diferentes riesgos producidos por agentes biológicos, físicos, químicos y mecánicos. Estas normas nos indican cómo hacer para cometer menos errores y sufrir pocos accidentes y, si ellos ocurren, cómo debemos minimizar sus consecuencias. Bioseguridad debe entenderse como una doctrina de comportamiento encaminada a lograr actitudes y conductas que disminuyan el riesgo del trabajador de la salud de adquirir infecciones en el medio laboral. Compromete también a todas aquellas otras personas que se encuentran en el ambiente asistencial, éste ambiente debe estar diseñado en el marco de una estrategia de disminución de riesgos. Para evitar la propagación de las enfermedades o contagiarnos debemos Interrumpir el proceso de transmisión de las mismas. Entonces es preciso tomar medidas protectoras tanto para protegernos y proteger a las personas que están bajo nuestro cuidado. Durante el trabajo es esencial tener en cuenta los principios básicos de bioseguridad. En los dentistas, las lesiones percutáneas son ocasionadas por fresas (37%), agujas de jeringas (30%), instrumentos cortantes (21%), alambres ortodónticos (6%), agujas de sutura (3%), hojas de bisturí (1%), y otros objetos (2%). Sin embargo, en los últimos años, las lesiones por punción con aguja han descendido bastante. 5 2.1.2 LOS PRINCIPIOS DE BIOSEGURIDAD 2.1.2.1 Universalidad: Implica considerar que toda persona puede estar infectada. Asimismo, considerar todo fluido corporal como potencialmente contaminante. Las medidas deben involucrar a todos los pacientes de todos los servicios, independientemente de conocer o no su serología. Todo el personal debe seguir las precauciones estándares rutinariamente para prevenir la exposición de la piel y de las membranas mucosas, en todas las situaciones que puedan dar origen a accidentes, estando o no previsto el contacto con sangre o cualquier otro fluido corporal del paciente. Estas precauciones, deben ser aplicadas para todas las personas sin excepción ni distinción, independientemente de presentar o no patologías. 2.1.2.2 Uso de barreras: Comprende el concepto de evitar la exposición directa a sangre y otros fluidos orgánicos potencialmente contaminantes, mediante la utilización de materiales adecuados que se interpongan al contacto de los mismos. La utilización de barreras (ej. guantes) no evitan los accidentes de exposición a estos fluidos, pero disminuyen las consecuencias de dicho accidente. 2.1.2.3 Medios de eliminación de material contaminado: Comprende el conjunto de dispositivos y procedimientos adecuados a través de los cuales los materiales utilizados en la atención de pacientes, son depositados y eliminados sin riesgo de contagio por mal manejo de estos. 2.1.3 RECOMENDACIONES DE BIOSEGURIDAD El odontólogo es un profesional universitario, con una sólida formación científico-humanista en cuyo ámbito de acción debe ser capaz de: Brindar atención odontológica de alta calidad y referir, con prontitud y acierto, a aquellos pacientes que requieren cuidados odontológicos especializados. Además, deberá ejecutar acciones de promoción de 6 Salud y, en lo específico odontológico, participar en prevención de enfermedades, recuperación y rehabilitación de las mismas. Asimismo, deberá adoptar las disposiciones odontológicas y reglamentarias vigentes referidas a normas de salubridad y medio ambiente, conduciéndose según los propios principios éticos y humanistas, que exige el cuidado de la integridad biológica, física y sicológica de los pacientes. Cuando se realizan procedimientos odontológicos de rutina, se pueden causar durante las maniobras pequeños sangrados o incluso no es raro observar sangrados espontáneos. Si tenemos en cuenta además, que la cavidad bucal es portadora de una multiplicidad de agentes microbianos, podemos concluir que el odontólogo puede contaminarse o contaminar accidentalmente. Por esta razón, creemos que el odontólogo debe conocer detalladamente las normas de bioseguridad e incorporarlas a su práctica cotidiana 2.1.4 MECANISMOS DE INFECCIÓN: La infección en la práctica estomatológica puede producirse por los siguientes mecanismos: Contacto directo con la sustancia infectada (lesión, sangre, saliva). Contacto directo con objetos contaminados. Salpicaduras de sangre o saliva, secreciones nasofaríngeas sobre la piel o mucosa sana o erosionada. Contaminación por aerosoles infectados. 7 2.1.5 PRECAUCIONES EN LA CONSULTA DEL PACIENTE: Considerar los siguientes aspectos en la evaluación del paciente: 2.1.5.1 En la historia clínica: Referencias sobre la pérdida de peso, procesos infecciosos por bacterias, virus, hongos (con especial énfasis en infecciones por mycobacterium tuberculosis, virus de Hepatitis B, C, Herpes simple y SIDA). 2.1.5.2 En el examen clínico: presencia de lesiones en piel o mucosa; linfadenopatías 2.1.6 RECOMENDACIONES PARA EL TRATAMIENTO DE PACIENTES 2.1.6.1 Lavado de manos: a) Su finalidad es eliminar la flora bacteriana transitoria, reducir la residente y evitar su transporte. b) Por ello es imprescindible el lavado de manos antes y después de la colocación de los guantes. La medida tiene como fundamento la posible existencia de lesiones y abrasiones que no puedan ser advertidas a simple vista, la presencia de sangre impactada debajo de las uñas del profesional y la posibilidad de perforaciones no visibles sobre la superficie de los guantes. c) Además deberá incluir a la limpieza adecuada del lecho subungueal. Para hacerla efectiva deberá siempre retirarse de las manos todas las alhajas, incluyendo el reloj. d) Se recomienda soluciones jabonosas que contengan un 4% de Gluconato de Clorhexidina como ingrediente activo debido a su acción residual. Los jabones en barra pueden convertirse en focos de infección cruzada. e) El enjuague debe realizarse con agua fría para cerrar los poros, el secado debe realizarse con servilletas o toallas de papel. Las toallas de felpa pueden convertirse en focos de infección cruzada. 8 f) Lavarse las manos inmediatamente después de contactar sangre, saliva o instrumental de operatoria. 2.1.6.2 Técnica del lavado de manos La técnica de lavarse las manos tiene la siguiente secuencia: a) Subirse las mangas hasta el codo b) Retirar alhajas y reloj c) Mojarse las manos con agua corriente d) Aplicar 3 a 5 min de jabón líquido e) Friccionar las superficies de la palma de la manos y puño durante 10 o 15 segundos f) Enjuagar en agua corriente de arrastre g) Secar con toalla de papel h) Cerrar la canilla con la toalla 2.1.6.3 Guantes a) Se recomienda para el examen clínico guantes descartables no esterilizados. b) Para procedimientos quirúrgicos se recomienda los descartables esterilizados. c) Los guantes reusables deben ser gruesos y se emplean solo para el lavado de instrumentos. d) Los guantes contaminados con sangre u otros fluidos deber ser descartados e) El lavado de guantes con agentes antisépticos altera la naturaleza del látex y no asegura el arrastre de microorganismos de su superficie. f) Para ver el gráfico seleccione la opción "Descargar" del menú superior g) Se debe evitar realizar acciones ajenas a la atención del paciente mientras procedimiento (tomar un frasco, abrir una puerta, contestar el teléfono, hacer una anotación, etc.) 9 Retirar los guantes: Luego del uso. Antes de tocar áreas no contaminadas o superficies ambientales. Antes de atender a otro paciente. Las manos deben ser lavadas inmediatamente después de retirados los guantes para eliminar la contaminación de las mismas que sucede aún con el uso de guantes. Lleva los guantes puestos. Si el tratamiento no es quirúrgico y debe ser momentáneamente interrumpido para luego continuar con el mismo 2.1.6.4 Mascarillas a) La mascarilla protege principalmente la mucosa nasal y evita su contaminación por aerosoles originados por el instrumental rotatorio del consultorio. Aunque la mascarilla protege la vía nasal y oral, esta última es menos peligrosa pues es la más difícil de transmitir gérmenes patógenos. b) Entre las mascarillas descartables, el material de elección es la fibra de vidrio o la mezcla de fibras sintéticas que filtran mejor los microbios que las de papel. c) Debe encajar cómoda y adecuadamente sobre el puente de la nariz para evitar el empañamiento de los protectores oculares d) En los procedimientos quirúrgicos la superficie de la mascarilla debe ser considerada material contaminado por lo que debe evitarse su contacto aún con las manos enguantadas. 2.1.6.5 Protectores oculares Evitan las lesiones oculares causadas por partículas proyectadas hacia el rostro del operador, a la vez que protege contra infecciones considerando que muchos gérmenes de la flora oral normal son patógenos oportunistas. Debido a la dificultad para su esterilización hay que lavarlos entre paciente y paciente con agua, jabón germicida o soluciones antisépticas. 10 Luego de ser enjuagados deben ser secados con toallas o servilletas de papel. El procedimiento no debe dañar la superficie del protector. 2.1.6.6 Vestimenta del profesional a) Comprende mandil, pechera y gorro. b) Tiene por finalidad evitar la introducción de microorganismos en el área de trabajo. c) Asimismo, evita la contaminación de la ropa normal durante la atención en el consultorio. d) Los mandiles deben tener manga larga, cuello alto y cerrado. 2.1.6.7 Esterilización y desinfección del consultorio, materiales y equipo: a) El local asistencial deberá contar de paredes y pisos de fácil lavado, evitando apliques innecesarios o materiales rugosos o porosos que dificulten la higiene del consultorio. b) La salivera deberá ser higienizada después de cada paciente eliminando todo tipo de residuos que se pudieran acumular, debiendo utilizar desinfectantes químicos. c) La mesa de trabajo deberá mantenerse en buenas condiciones de higiene durante toda la jornada de trabajo. Para lograrlo es recomendable colocar sobre el mismo papel descartable, que se cambiará luego de la atención de cada paciente. d) En dicha mesa de trabajo sólo deberá estar el equipamiento necesario para la atención de cada paciente. Se deberá evitar expresamente que el porta residuos se encuentre en dicha mesa de trabajo. 11 e) Con relación al foco se debe forrar el mango del mismo con una bolsita de nylon que deberá ser cambiada después de cada paciente. f) El instrumental deberá ser esterilizado o desinfectado en cajas cerradas o envuelto correctamente en papel, identificando para cada caso la fecha en que dicho procedimiento se realizó. g) Las fresas deben ser esterilizadas o desinfectadas como el resto del material y guardadas en cajas metálicas. h) No se las debe colocar para su uso en un fresero. i) Luego de ser utilizadas con un paciente, se debe proceder conforme al resto del instrumental sucio. j) No deben utilizarse las vitrinas para exponer el material fuera de las condiciones anteriormente señaladas. k) La limpieza de turbinas se podrá realizar utilizando compresas embebidas en glutaraldehído o alcohol con las concentraciones recomendadas, debiéndose realizar tal procedimiento de higiene luego de ser utilizadas con cada paciente. l) La esterilización y desinfección de los materiales reutilizables directamente vinculados a la atención de pacientes deberán seguir la secuencia siguiente: m) El material sucio deberá ser primeramente sumergido en una solución de hipoclorito al 0.5% o glutaraldehído al 2% durante 20 minutos. n) Luego se procederá al cepillado con detergente neutro o enzimático a fin de remover la materia orgánica. 12 2.1.7 RECOMENDACIONES DURANTE LA ATENCIÓN EN EL CENTRO ODONTOLÓGICO Además de las precauciones generales, debe tener presente las siguientes recomendaciones: Usar mandil o chaqueta de mangas largas, guantes, mascarillas y protectores de ojos al realizar los procedimientos quirúrgicos. Los instrumentos dentales empleados en cada paciente, debe esterilizarlos adecuadamente antes de reutilizarlos. Es recomendable que cuente con un juego de instrumental básico, incluido juego de fresas, para cada paciente. Al finalizar la labor del turno esterilícelos adecuadamente. La desinfección de fresas, cubetas de impresión material de acero no quirúrgico o de aluminio es recomendable que la haga con alcohol de 70% durante 30 minutos, el hipoclorito las corroe rápidamente. Los instrumentos sensibles al calor (espátula para resina y otros) puede someterlos a DAN y enjuagarlos posteriormente. No utilizar cartuchos de anestesia con solución sobrante en otro paciente. Ensartar la aguja de la cárpule en su protector mediante la técnica de una mano para evitar lesiones accidentales. Manipular con cuidado el material utilizado con cada paciente (radiografías, impresiones, registros de mordida, etc.) Tratar de evitar lesiones en las manos Es mejor que use esponja suave para el restregado de las manos. Las escobillas pueden ocasionarle microlesiones. 13 Durante el acto operatorio, utilice un protector plástico sobre su chaqueta y coloque otro en el paciente para evitar el contacto con la sangre y fluidos contaminados. Cite al paciente con sospecha de infección o con diagnostico confirmado para la ultima hora de consulta. Los vasos plásticos usados para el enjuagatorio deben ser descartables Utilice diques de goma, eyectores de alta velocidad y coloque al paciente en la posición más cómoda para evitar salpicaduras. Envuelva con plástico transparente los equipos y superficies difíciles de desinfectar (lámparas, cabezas de unidades de equipos de rayos X, etc.). Elimine estos protectores al concluir el acto operatorio. Es deseable la esterilización de piezas de mano entre paciente y paciente. De no ser posible, lavarla bien y sumergirla en solución desinfectante por 20 minutos (la clorhexidina 4% en dilución 60% es conveniente por no corroer el rotor, alcohol yodado si es corrosivo). La inserción de la placa radiográfica en la boca del paciente para la toma debe ser efectuada con instrumental, no con la mano. Luego de la toma, tomar la placa con una pinza enjuagarla a chorro y dejarla reposar unos minutos en solución desinfectante antes de su revelado. Revelar placas con pinzas para evitar lesión dérmica por ácidos Descontamine la jeringa triple remojándola en solución desinfectante por 30 minutos. Para evitar la aspersión del material infectado de la pieza de mano, deje correr y descargue agua de la pieza por 1 minuto antes de comenzar la atención del día y después de la atención de cada paciente. 14 Las superficies del equipo dental deben ser perfectamente lisas y casi sin uniones. Deben tener además, un acabado que permita la limpieza y la desinfección. 2.1.8 CONTROL AMBIENTAL 2.1.8.1 Cubiertas descartables: Reducen el tiempo dedicado a limpieza-desinfección de superficies que no puedan ser descontaminadas con facilidad entre atenciones como el sillón dental bandejas, mesas de trabajo, entre otros. Pueden ser: hojas de aluminio, bolsas de polietileno, compresas de papel forradas en plástico, etc. La persona que elimina las cubiertas descartables contaminadas debe tener guantes de goma gruesos, mascarilla y protectores oculares. 2.1.8.2 Eliminación de desechos Los desechos son de tres tipos: Comunes o no contaminados, infecciosos o contaminados y especiales. a) Desechos comunes o no contaminados: No representan riesgo de infecciones para las personas que los manipulan, tales como papeles, cajas, botellas no usadas para muestras, recipientes plásticos, etc. b) Infecciosos o contaminados: Son desechos con grandes cantidades de microorganismos y si no se eliminan en forma apropiada, son potencialmente riesgosos. Muchos de ellos están contaminados con sangre, pus, y otros fluidos corporales. c) Desechos especiales: Los constituyen elementos radiactivos y líquidos tóxicos, tales como sustancias para revelado de Rx, insecticidas, etc. Recuerde que el manejo apropiado de los artículos de desecho minimiza la propagación de las infecciones al personal de salud y a la comunidad local, protege de lesiones accidentales. 15 2.1.9 ESTERILIZACIÓN Es el proceso que destruye todos los tipos y formas de microorganismos, incluidos virus, bacterias, hongos y endosporas bacterianas. Los principales métodos de esterilización con autoclave a vapor, calor seco, vapor químico a presión, óxido de etileno e inmersión en desinfectantes/ esterilizadores químicos líquidos. Se recomienda cuatros elementos indispensables para asegurar una esterilización 2.1.9.1 Aseguran una esterilización apropiada: Equipo de esterilización de alta calidad y mantenimiento del mismo. Operación correcta del equipo de esterilización. Capacitación completa operador. Empleo semanal de inhibidores biológicos para vigilar la eficacia de la esterilización. 2.1.9.2 Métodos de esterilización Los cuatro métodos de esterilización que generalmente se aceptan en odontología son: a) Vapor a presión-autoclave: Los criterios que suelen utilizarse para la esterilización en autoclave son una temperatura de 121°C a 15p.s.i (lb/pulg). Durante un periodo de 15 a 40 min. El tiempo depende de los materiales por esterilizar en el autoclave, el tamaño de la carga y el tipo de recipiente que se utilice. Este método incluye la técnica de esterilización rápida, para actual se utilizan tiempos más breves con temperaturas más altas. Las desventajas de la esterilización en autoclave incluyen la oxidación, la corrosión y la pérdida del filo de los instrumentos, sobre todo los hechos de acero al carbón. Algunos plásticos y el caucho son sensibles al calor y la humedad, y no se pueden colocar en autoclave. 16 b) Esterilización con vapor químico-quimioclave: Este método se basa en los factores de sinergismo del calor, el agua y sustancias químicas como alcohol, acetona, etonas y formaldehido. El contenido de agua es inferior de 15%, nivel por encima del cual ocurre oxidación, corrosión y perdida del filo de los instrumentos. La principal desventaja es el olor que emiten las sustancias químicas al calentarse. Este es un método de esterilización muy utilizado en los consultorios de endodoncia. c) Esterilización con calor seco: La esterilización con calor seco se lleva a cabo en las estufas llamadas “Poupinel”. La acción bactericida del calor seco, se debe a la oxidación física o a una lenta coagulación de las proteínas bacterianas por acción del calor. El calor seco se forma de aire caliente es difícil de controlar. La penetración en los materiales es lenta y casi igual y requiere largo periodo de exposición. 2.1.10 CLASIFICACIÓN DE LA ESTERILIZACIÓN DE INSTRUMENTOS La clasificación de Spaulding ha sido citada como una metodología parar la esterilización de éstos depende del contacto con diferentes tipos de tejidos para saber si se requiere esterilización o desinfección. Se encuentran las siguientes categorías: 2.1.10.1 Equipo crucial: instrumentos que tocan zonas estériles del cuerpo o que entran en el sistema vascular, y los que penetran la mucosa bucal. Son ejemplo de ellos bisturíes, curetas, fresas y limas. Dada la posibilidad de que alberguen microorganismos, también deben esterilizarse las piezas de mano dentales. Los instrumentos de estas categorías se esterilizarán y se almacenarán en envoltorios apropiados. Los instrumentos de un solo uso se descartarán apropiadamente. 2.1.10.2 Materiales semicruciales: instrumentos que tocan mucosas, pero que no penetran tejidos. En esta categoría se encuentran los 17 condensadores de amalgama y eyectores de saliva. Estos instrumentos deben esterilizarse; sin embargo, si esto no es posible, se requiere una desinfección de alto nivel, o descartarlos. 2.1.10.3 Instrumentos no cruciales: son aquellos instrumentos y materiales que no entran en contacto con la mucosa bucal, pero que son tocados por saliva o manos contaminadas con sangre mientras se trata a los pacientes. Son ejemplo los interruptores de luz, mostradores y agarraderas de cajones en gabinetes. Estas zonas deben desinfectarse apropiadamente. 2.1.10.4 Preparación para la esterilización Como primer paso, se preparan con cuidado los instrumentos y el equipo para los procedimientos de esterilización o desinfección. Esta limpieza preliminar es indispensable para retirar sangre, saliva, tejido y otros residuos que pueden obstaculizar el proceso de esterilización. Se limpian minuciosamente los instrumentos cepillándolos con jabón y agua o una solución de detergente, o con un dispositivo mecánico. El empleo de un limpiador ultrasónico cubierto es un método eficaz para aumentar la eficacia de la limpieza y reducir la manipulación de instrumentos cortantes. Cuando no es posible limpiar y procesar instrumentos inmediatamente después de su uso, se pueden conservar en una “solución de mantenimiento”, para evitar en el material orgánico se seque en ellos y después dificulte su limpieza. Para este propósito se puede emplear agua, una solución detergente o un desinfectante de nivel intermedio 18 2.1.11 DESINFECCIÓN Por desinfección se entiende la destrucción de los microorganismos patógenos vegetativos. El proceso, sin embargo, apenas afecta a los bacilos tuberculosos, las esporas y los virus. En odontología se emplean los siguientes compuestos: Alcoholes (etílico o isopropílico) Compuestos fenólicos (por ejemplo, hexaclorofeno) Sales de amonio cuaternario (por ejemplo, Zephiran) Halógenos (por ejemplo, clorhexidina) Ácidos orgánicos (por ejemplo, ácido caproico). El efecto que ejercen estos desinfectantes sobre diferentes microorganismos es variable, y mínimo sobre esporas y virus. Con el empleo de soluciones antisépticas no se logra la esterilidad del instrumental ni de los materiales y las sales mercuriales de metales pesados (por ejemplo, Merfen, mercurocromo) ya no pueden recomendarse en la actualidad. Es el proceso menos letal que la esterilización. Todos los materiales que puedan esterilizarse, deben esterilizarse. En casos en los que no es posible la esterilización, la desinfección se añade a los métodos para prevenir la contaminación cruzada. La desinfección constituye un método intermedio respecto a la esterilización; sin embargo, contribuye sustancialmente a reducir los microorganismos. Se considera aceptable un desinfectante en odontología si la solución está registrada en la Environmental Protección Agency (EPA) o es aprobada a aceptada por la American Dental Association. A continuación se les presenta una seri de desinfectantes de instrumentos y de superficies que han sido aceptados por la ADA como desinfectantes líquidos 19 2.1.11.1 Preparación de glutaraldehido. En la actualidad existe una gran cantidad de preparaciones de glutaraldehído. La desinfección tiene lugar en un lapso de 10 a 30 min, y hay varios tipos de preparaciones que tienen la capacidad de esterilización como: a) Ácidas al 2%: a 60°C durante 1 h b) Alcalinas al 2%: a temperatura ambiente durante 10 h c) Alcalinas al 2% con amortiguador fenólico: a temperatura ambiente durante 6.75h Los glutaraldehído por lo general no son recomendables para la esterilización, de las soluciones activadas, los problemas de dilución y la imposibilidad de vigilar la esterilización. Algunas soluciones de glutaraldehído están aprobadas por la ADA como desinfectantes y esterilizantes si se utilizan de acuerdo con las instrucciones de los fabricantes. Las soluciones están registradas en la EPA únicamente como desinfectantes de inmersión. Se utilizan sobre superficies operatorias y actúan en un término de 3 a 30 min, lo cual depende de la cantidad de residuos y de los tipos de residuos y de los tipos de virus presentes. Sin embargo los glutaraldehídos tienen desventajas como desinfectantes de superficies; por ejemplo, la toxicidad del vapor, la irritación de las manos y de los ojos, y su costo. Por tanto no son recomendables. Se dispone de una tira de vigilancia para poner a prueba la potencia de la solución, y es conveniente usarla en vez de depender del número de días en que se utilice la solución. 2.1.11.2 Dióxido de cloro Los compuestos de dióxido de cloro desinfectante instrumentos y superficies operatorias en un lapso de 31 a 3 min, cuando se usan correctamente. La solución no requiere enjuague y no deja residuos después de utilizarse. No hay requisitos de manejo especial o de desecho. Las soluciones pueden esterilizar materiales en 6h a temperatura ambiente. Se ha comunicado que esta sustancia no es 20 tóxica, irritante ni sensibilizante. Las desventajas son la corrosión de metales fácilmente oxidados, y la necesidad de soluciones de frescas nuevas para cada proceso de esterilización/desinfección. 2.1.11.3 Hipoclorito de sodio (blanqueador casero) El hipoclorito de sodio es más apropiado para la desinfección de superficies que para la esterilización de instrumentos, debido a su alta acción corrosiva sobre los metales. En general se recomiendan diluciones de 1.5 a 1.1. En las superficies, el hipoclorito de sodio es virucida, bactericida y tuberculocida. La desinfección puede presentarse en un lapso de 3 a 30 min, y esto depende de la cantidad de residuos presentes. Es el menos costoso de los desinfectantes de superficies. Como se mencionó antes la principal desventajas es el factor de corrosión. La solución también tiende a ser inestable y debe prepararse diariamente. Como desinfectante de superficie, despide un olor fuerte desagradable. Las cubiertas de plásticos de los sillones tienden a agrietarse con el uso prolongado. 2.1.11.4 Yodóforos Son desinfectantes de amplio eficaces contra una gama de microorganismos patógenos, como HVB Mycobacterium tuberculosis, poliovirus y virus del herpes simple. Una de las ventajas de estos compuestos es que liberan lentamente yodo, lo cual intensifica la actividad bactericida. Un vehículo tensioactivo mantiene húmeda la superficie tenga aspecto seco. En el caso de un yodóforo para superficies sólidas la dilución más eficaz es de una parte de este por 213 partes de agua blanda o destilada. El agua dura inactiva los yodóforos. La actividad biocida tiene lugar al cabo de 30 minutos. Los yodóforos también tienen un indicador de color incorporado. Cuando es de preparación reciente, la solución presenta un color ámbar. A medida que envejece, cambia a amarillo claro, lo cual indica la pérdida de las moléculas del yodóforo. Se consideraba que la mezcla de éste con 21 alcohol intensificaba la actividad, pero las pruebas de investigaciones son insuficientes para sostener esta afirmación. El compuesto de yodóforo se utilizará como desinfectante. No se han demostrado capacidades esporicidas de la sustancia. 2.1.11.5 Alcoholes Estos no son aceptables por la ADA para la desinfección de superficies ni instrumentos. 2.1.11.6 Compuestos de amonio cuartenario Este grupo de compuestos, incluido el cloruro de benzalconio, ya no es recomendado para la desinfección de instrumentos o de superficies. Todos los compuestos de amonio cuaternario han sido desaprobados por la ADA para uso odontológico. Se distinguen tres niveles de desinfección, los cuales dependen del tipo y la forma de microorganismos destruido: a) Desinfección de alto nivel. Un proceso que puede destruir algunas esporas bacterianas, pero no necesariamente todas. Es tuberculocida, y si el desinfectante puede destruir esporas bacterianas, se denomina esporicida. b) Desinfección de nivel intermedio. Un proceso capaz de destruir Mycobacterium tuberculosis, virus de la hepatitis B y HIV. Es posible que no destruya esporas bacterianas. c) Desinfección de bajo nivel. Un proceso que destruye la mayor parte de las bacterias, algunos hongos y algunos virus. No destruye M. tuberculosis ni esporas bactrianas. 22 2.1.12 TÉCNICAS DE DESINFECCIÓN 2.1.12.1 Desinfección por inmersión: las soluciones deben ser recientes y cambiarse de acuerdo con las recomendaciones del fabricante. Se limpian todos los instrumentos mediante cepillado minucioso con agua y jabón o con un limpiador mecánico. Deberán usarse guantes de caucho para trabajo pesado durante la descontaminación del instrumento. Se secaran estos antes de colocarse en el desinfectante, para evitar la dilución. 2.1.12.2 Desinfección de la superficie: la superficie de mostradores y las que se han contaminado con sangre, saliva o residuos, deben limpiarse, frotarse o ambas cosas, para retirar el material orgánico después de aplicar en aerosol un desinfectante de superficie apropiado. Una vez limpiada, se vuelve aplicar el aerosol en la superficie, y se deja esta humedad durante el periodo recomendado. La descontaminación de superficie tiene una eficacia aproximada de 80% en el control bacteriano. 2.1.12.3 Descontaminación de unidades: las unidades dentales se han sometidos a escrutinio en el campo del control de infecciones. Se han recomendado válvulas de retención para evitar la aspiración de materiales infectantes hacia piezas de mano y tuberías de agua. Sería peligroso que al tratar a un paciente infectado por HBV, HIV o el bacilo de la tuberculosis, estos microorganismos fueran aspirados hacia la unidad y se les permitirá colonizarlas. Más tarde podrían descargarse en las bocas de pacientes subsiguientes. 2.1.12.4 Requisitos del desinfectante ideal a) Debe ser efectivo tanto germicida como fungicida. b) No debe ser irritante a los tejidos periapicales. c) Debe ser estable en solución. d) Debe tener un efecto antimicrobiano prolongado. 23 e) Debe ser activo en presencia de sangre, suero, y derivados proteicos del tejido. f) Debe tener una tensión superficial baja. g) No debe interferir con la reparación de los tejidos periapicales. h) No debe pigmentar los dientes. i) Debe ser posible su inactivación en un medio de cultivo. j) No debe inducir una respuesta inmune celular. 2.1.13 ASEPSIA Y ANTISEPSIA Comprenden un conjunto de procedimientos, en cualquier trabajo que involucre al ser humano, aunque este concepto no haya sido siempre dominante. Hasta 1867, se llegó a la conclusión de que las infecciones eran causadas por “algo”. En 1878, Pasteur define en términos claros, que las infecciones eran causadas por gérmenes específicos para cada tipo de enfermedades. En lo que respecta a la odontología, en 1878, Rogers observó que los microorganismos eran los principales causantes de los problemas endodónticos y la bacteriología dental se inicia con Miller en 1890. 2.1.13.1 Asepsia Es un conjunto de procedimientos que tienen por objeto impedir la penetración de gérmenes en el sitio que no los contenga. 2.1.13.2 Antisepsia Es la destrucción de los gérmenes por medio del empleo de antisépticos. Los medios de que disponemos para la aplicación de los principios de estos dos procedimientos descritos, se consiguen a través de la esterilidad y la desinfección del ambiente de trabajo, del instrumental utilizado, así como del campo operatorio. Esterilizador de bolitas de vidrio o cuarzo o granos de sal por ser este método propio de la especialidad de endodoncia se describirá. Los demás 24 métodos son utilizados en todas las ramas de la medicina y odontología y el alumno ya los conoce. El aparato en sí mismo es compacto y eficiente. Consiste esencialmente de un vaso metálico en el que se almacena sal común, o bolitas de vidrio a una temperatura entre 220 ºC y 250 ºC. Un termómetro adecuado siempre debe estar sumergido en la sal para verificar la temperatura todo el tiempo. A esta temperatura las limas, ensanchadores y tiranervios se esterilizan en 5 segundos mientras que las puntas de papel y torundas de algodón en 10 segundos. Algunos autores recomiendan substituir las bolitas de vidrio por granos de sal común para evitar que el vidrio, accidentalmente, sea transportado por los instrumentos a un conducto radicular obturándolo. En el caso de que esto sucediera con la sal, ésta podría ser disuelta con irrigación. Para esterilizar un instrumento adecuadamente, se debe introducir por lo menos 1 cm bajo la superficie de la sal y en el área periférica del esterilizador, puesto que es más caliente que la porción central. 2.1.14 PROTOCOLO PREOPERATORIO Durante el tratamiento de los conductos radiculares es frecuente que se tengan que esterilizar varias veces los instrumentos, en particular las limas, antes de introducirlos de nuevo en los conductos, debido a que muchas técnicas endodónticas, y en particular las técnicas mecánicas, requieren recapitular constantemente los conductos radiculares. Las limas contaminadas deberán someterse a un método de esterilización eficaz y rápido. No es suficiente sumergirlas en una solución antiséptica como sistema de desinfección previo a su reutilización, puesto que, por medicación de sustancias químicas, podremos obtener la desinfección rápida del instrumental, pero nunca su esterilización. 2.1.14.1 Limpieza y desinfección del instrumental Al igual que la esterilización post operatoria, se debe limpiar y desinfectar el instrumental para eliminar restos orgánicos que dificulten la acción 25 directa del calor. Diversos desinfectantes coagulan las proteínas y esta materia orgánica fijada a la superficie del instrumental dificultan la acción del calor seco. El objetivo de la limpieza consiste en eliminar todo residuo orgánico e inorgánico de la superficie del instrumental y así facilitar la acción del método de esterilización. 2.1.14. 2 Esterilización La completa esterilización de la parte activa del instrumental se consigue mediante la utilización de los esterilizadores de calor rápido. Estos aparatos son pequeños y constan de una carcasa metálica exterior, que puede incluir un termómetro interno que contiene un recipiente metálico en su interior que se puede rellenar con bolas de vidrios, bolitas de cuarzo, arena o sal común. Este relleno transmite la temperatura generada por unas resistencias periféricas. La eficacia de esos esterilizadores depende de tres parámetros: tipo de relleno, temperatura y tiempo. 2.1.14.3 Tipo de relleno Las bolas de vidrio, de 1 a 2mm de diámetro, de sal común y la arena fina son el relleno frecuentemente más empleado, aunque también se han utilizado bolitas de acero. Si bien casi todos los esterilizadores contienen bolas de vidrio en su comercialización. 2.1.14.4 Temperatura La temperatura depende de varios factores: resistencias del esterilizador, relleno y ubicación del instrumento durante la esterilización los distintos tiempos de resistencia generadoras de calor favorecen que unos modelos alcancen mayor temperatura que otros. 2.1.14.5Tiempo La mayor parte de los fabricantes aconsejan someter el instrumental a tan solo 5 seg para el instrumental metálico y 10 seg para las puntas de papel absorbentes y torundas de algodón. 26 2.1.15 PROTOCOLO POSTOPERATORIO A finalizar el tratamiento de conductos, se debe someter el instrumental contaminado a un protocolo de esterilización postoperatorio que garantice su limpieza y esterilización sin que afecte, de forma significativa, las propiedades físicas del mismo. El sistema de esterilización más universal consta de 4 fases: desinfección, limpieza, esterilización y almacenamiento. Persigue 3 objetivos: esterilizar el instrumental para evitar el contagio cruzado paciente-paciente; evitar el contagio accidental del personal auxiliar en su manipulación e impedir la contaminación del interior del conducto mediante microorganismos ajenos a éste. 2.1.15.1 Esterilización y reesterilización del instrumental y materiales endodónticos. Control de las infecciones en endodoncia. Los recientes descubrimientos en el campo de transmisión de algunas enfermedades como la provocada por el virus de la hepatitis B y el virus de inmunodeficiencia humana (VIH) han dado nuevo énfasis al problema de contaminación cruzada durante el tratamiento dental. Aproximadamente el 80% de los infectados de hepatitis B transcurren sin dar síntomas y algunos pacientes sabedores de su enfermedad lo ocultan, razones por las que las historias clínicas no son confiables para detectar a estos enfermos. El síndrome de inmunodeficiencia adquirida (SIDA) es la etapa final de la infección por VIH. A pesar de que el VIH ha sido aislado de casi todo líquido corporal incluyendo la saliva, la evidencia epidemiológica asocia la transmisión de la infección primariamente con sangre, semen, secreciones vaginales y leche materna. No hay evidencia de su transmisión por piquetes de insectos, contacto casual como estrechar la mano, compartir comida o por besos en los labios. 27 Algunas formas de transmisión del VIH aparecen como más eficientes que otras: el riesgo de transmisión de sangre transfundida de un donador VIH positivo es del 90%, mientras que la transmisión por agujas contaminadas es de 0.5%. A pesar de que la transmisión del virus de la hepatitis B y VIH hay acaparado la atención mayoritaria, muchas otros patógenos (bacterias, virus y hongos) han sido identificados en la saliva y sangre. El personal médico-dental tiene una incidencia significativamente más grande que la población abierta. El VIH ha sido encontrado en pulpas dentales. 2.1.15.2 Cadena o protocolo aséptico. a) Lavado de manos y uso de guantes desechables. b) Desinfección y esterilización (cuando sea posible) del equipo odontológico c) Esterilización del instrumental endodóntico. d) Desinfección del material endodóntico e) Aislamiento con dique de hule sin filtraciones salivales. f) Desinfección del campo operatorio. g) Reesterilización del instrumental insertado en los conductos radiculares. h) Almacenaje de instrumental estéril y no estéril. 2.1.15.3 Barreras físicas. Una de las formas más efectivas para reducir la dosis de microbios a la que está expuesto el personal de salud dental son las barreras físicas. Para prevenir la contaminación cruzada y proteger las manos del personal, el uso de guantes debe ser permanente. Es importante el lavado con agua y jabón antes de la colocación de los guantes porque la piel alberga microbios transitoriamente. El lavado también previene irritaciones cutáneas causadas por microbios que crecen en la piel húmeda dentro de los guantes. Se recomienda el secado de manos con 28 toallas de papel desechables. El tipo de guante depende del trabajo en particular y del gusto del usuario. Para manejar áreas contaminadas sin posibilidad de esterilización (teléfono, manijas de muebles, puertas, etc.) se deberán cubrir con plástico autoadhesivo o con guantes sobrepuestos. Al retirar los guantes el personal deberá lavarse nuevamente las manos con agua y jabón. 2.1.16 DESINFECCIÓN DEL CONDUCTO RADICULAR La desinfección del conducto radicular, esto es, la destrucción de los microorganismos patógenos presupone la remoción previa y adecuada del tejido pulpar y derbis, la limpieza y ensanchado del conducto por medios biomecánicos e irrigación. La desinfección del conducto radicular se realiza por medio de la medicación intraconducto. Cuatro factores predisponen a la infección o contrarrestan la desinfección, además de retrasar la cicatrización: 2.1.16.1 Trauma: El diente bajo tratamiento debe ser desocluído si es necesario. 2.1.16.2 Tejido desvitalizado: Si está presente en el conducto radicular o en el tejido periapical, interferirá con la desinfección o con la reparación. 2.1.16.3 Espacios muertos: Para ejercer un efecto máximo, el medicamento debe estar en contacto con los microorganismos en el conducto radicular. 2.1.16.4 Acumulación de exudado: El exudado debe drenarse o debe ser removido mientras se acumula. La curación temporal debe ser cambiada por lo menos una vez a la semana o más frecuentemente en el caso de un absceso agudo bajo tratamiento. Al revisar las condiciones y situaciones para las que se han 29 indicado los medicamentos, es interesante observar que sus propiedades químicas y terapéuticas son consideradas fundamentalmente antimicrobianas. Sin embargo, también son dirigidas hacia la consecución del confort del paciente o hacia la neutralización de los conductos radiculares. a) Eliminación de microorganismos.- El objetivo es destruir todos los microorganismos viables o todos los patógenos en el espacio del conducto. b) Producir que el contenido del conducto sea inerte.- Esto representa el intento, utilizando medios químicos, de momificar, fijar o neutralizar de otro modo los tejidos, o residuos dejados intencional o accidentalmente en el espacio pulpar. c) Prevención o control del dolor después del tratamiento.- El objetivo es reducir o alterar la respuesta inflamatoria. Los medicamentos pueden lograr esto por medio de su acción antimicrobiana o gracias a la modificación farmacológica de la respuesta inflamatoria en sí misma. El dolor también puede controlarse por la acción farmacológica o química del medicamento en contacto directo con los nervios sensoriales en la pulpa o tejidos periapicales. d) Aumentar la anestesia.- Se han sugerido agentes como un medio de disminuir la sensibilidad de la pulpa inflamada difícil de anestesiar. 30 2.1.17 NORMAS DE BIOSEGURIDAD PARA EL ÁREA DE ODONTOLOGÍA Recuerde que la sangre y la saliva de cualquier paciente deben ser consideradas como potencialmente contaminadas y de alto riesgo para el personal del área odontológica. 1. Utilice permanentemente el gorro, mascarilla, careta, bata y guantes en todos los procedimientos en que se espere, salpicaduras o gotitas aerosoles. 2. Lávese las manos al iniciar, terminar el turno y después de cada procedimiento. 3. Maneje con estricta precaución el material cortopunzante (agujas, hojas de bisturí, cuchillas, curetas), deséchelo en el guardián ubicado en el servicio. 4. Las servilletas en donde se coloca el instrumental deben cambiarse entre paciente y paciente. 5. El material y los equipos de trabajo deben desinfectarse, desgerminarse y esterilizarse después de cada procedimiento de acuerdo a los procedimientos básicos de limpieza y desinfección. 6. El uso de diques de goma eyectores de alta velocidad con dispositivos desechables y una adecuada posición del paciente, disminuye el riesgo de contaminación en los distintos procedimientos. 7. Maneje el resto de los elementos y equipos de trabajo odontológico según indicaciones que aparecen en las normas generales de bioseguridad. 8. Las mangueras de los eyectores y las pinzas de mano usadas con aire, deben ser aireadas por 20 segundos al inicio del día laboral y entre cada paciente. 9. Las mangueras de los eyectores deben someterse a succión por 20 segundos en solución tipo desinfectante de alto nivel 31 como el hipoclorito de sodio a 5000 ppm., al inicio del día laboral y entre cada paciente. 10. El material de impresión y de laboratorio que sea introducido en la boca del paciente, debe ser limpiado y transportado en recipiente seguro al laboratorio dental. 11. No se recomienda usar desinfectantes porque estos alteran las propiedades del material de impresión. 12. Disponga en forma adecuada los desechos. 13. Descontamine las superficies de trabajo, de acuerdo a los procedimientos básicos de limpieza y desinfección. 2.1.18 RECOMENDACIONES PRÁCTICAS PARA DESARROLLAR ACTIVIDADES VINCULADAS A LA ASISTENCIA DE PACIENTES. Manejo de materiales corto-punzantes como aguja, bisturí, instrumentos puntiagudos, láminas, etc. Para evitar accidentes laborales, es obligatorio desechar los materiales corto-punzantes en descartadores luego de su uso. Se recomienda: No reencapuchar las agujas. No doblarlas. No romperlas. No manipular la aguja para separarla de la jeringa. De ser posible usar pinzas para manipular instrumentos cortopunzantes. Los recipientes descartadores deben estar lo más próximo posible al área de trabajo. Agujas y jeringas. Se deberán usar materiales descartables. Las jeringas y agujas usadas deben ser colocadas en recipientes descartadores. Las agujas no deben ser dobladas ni se les debe colocar el capuchón protector y éste debe desecharse en el mismo momento en que se retira de la aguja estéril. 32 2.1.18.1 Descartadores.- Se considera descartadores al recipiente donde se depositan, con destino a su eliminación por incineración, todos los materiales corto punzantes. Estos descartadores no deben bajo ninguna circunstancia ser reutilizados. El descartador debe estar hecho con material resistente a los pinchazos y compatible con el procedimiento de incineración sin afección del medio ambiente. Es recomendable que los descartadores tengan asa para su transporte y que la misma permita manipularlo lejos de la abertura del descartador. La abertura debe ser amplia de forma tal que al introducir el material descartado, la mano del operador no sufra riesgo de accidente. El descartador debe tener tapa para que cuando se llene hasta las tres cuartas partes del volumen del mismo, se pueda obturarlo en forma segura. Los descartadores deben ser de color amarillo y tener el símbolo de material infectante y una inscripción advirtiendo que se manipule con cuidado. Deberá tener dicha inscripción y símbolo, de dimensiones no menores a un tercio de la altura mínima de capacidad del recipiente y con dos impresiones, de forma de visualizarlo fácilmente desde cualquier posición. 2.1.18.2 Material de curaciones (gasas, torundas).- Luego de su uso deberán colocarse en una bolsa de plástico (de color amarillo) que se cerrará adecuadamente previo a su incineración directa o envío como residuo hospitalario. 2.1.18.3 Limpieza diaria.- Todo el ambiente asistencial debe ser higienizado con agua y detergentes neutros, utilizando utensilios de limpieza que al tiempo de facilitar la tarea protejan al trabajador. En caso de existir sangre y fluidos corporales, se indica el tratamiento local previo con uso de compuestos clorados. El personal de servicio deberá usar uniformes adecuados con guantes de limpieza y demás utensilios (equipamiento de protección individual. 33 2.1.18.4 Clasificación de materiales. a) Críticos.- Los materiales o instrumentos expuestos a áreas estériles del cuerpo deben esterilizarse. Ej. Instrumental quirúrgico y/o de curación. b) Semi crítico.- Los materiales o instrumentos que entran en contacto con membranas mucosas pueden esterilizarse o desinfectarse (glutaraldehído). Endoscopios, con Ej. desinfectantes Equipo Cánulas de de alto nivel terapia ventilatoria, endotraqueales, Espéculos vaginales de metal. c) No crítico Los materiales o instrumentos que entran en contacto con la piel íntegra, deben limpiarse con agua y jabón y desinfectarse con un desinfectante de nivel intermedio o de bajo nivel. Ej. Esfignomanómetros, Vajilla, Chatas y violines, Muebles, Ropas. Los artículos críticos, semicríticos y no críticos deben ser limpiados mediante acción mecánica utilizando agua y un detergente neutro o enzimático. Todos los materiales, luego de ser usados deberán ser colocados en inmersión en un detergente enzimático o neutro durante un mínimo de 5 minutos, posteriormente cepillados y enjuagados en agua potable corriente a los efectos de retirar todo resto de materia orgánica presente. Luego secados y de acuerdo a la categorización del material deben ser esterilizados o desinfectados. Los críticos deben ser esterilizados, los semicríticos pueden ser procesados con desinfectantes de alto nivel (ej. glutaraldehído al 2% en un tiempo mínimo de 20 minutos) y los no críticos mediante desinfección de nivel intermedio o de bajo nivel. 34 2.1.19 CRITERIOS PARA DESINFECCIÓN DESCONTAMINACIÓN, LIMPIEZA, DESINFECCIÓN 2.1.19.1 Descontaminación.- Es un pretratamiento necesario para su protección cuando se manipula materiales potencialmente contaminados. Debe utilizar detergentes enzimáticos y luego desinfectantes. Puede usar cloro al 0.5%, fenol al 5%, peróxido de hidrógeno al 6%, glutaraldehido, formaldehído, etc. El glutaraldehido es lo más recomendable para instrumental metálico. 2.1.19.2 Limpieza.- Es la eliminación física de la sangre, fluidos corporales o cualquier otro material extraño visible (polvo o suciedad) de la piel o de los objetos inanimados. Es necesario limpiar concienzudamente con agua y detergente; los cepillos dentales duros son adecuados para eliminar el material orgánico de los equipos e instrumentos. Con este paso se eliminará la mayoría de los microorganismos (hasta un 80%) 2.1.19.3 Desinfección química.- Para conseguir un DAN (Desinfección de Alto Nivel) remojar los artículos en un desinfectante químico de alto nivel por 20 minutos y después enjuagarlos bien con agua estéril o hervida. Desinfectantes Químicos: a) Soluciones de cloruro.- Inactivan todas las bacterias, virus, parásitos y algunas esporas. Son poco costosas, de fácil disponibilidad y actúan con rapidez. Son muy eficaces contra el virus de Hepatitis B y el VIH ( virus del SIDA) Puede descontaminar grandes superficies como mesas de exámenes Procedimiento: 35 Usar solución de cloro al 0.1% en agua potable. Las superficies (mesas, camillas, sillones dentales, etc.), frótelas prolijamente con un trapo embebido en la solución, dejar actuar unos 10 minutos y luego volver a limpiar Reemplace la solución diariamente o con mayor frecuencia, porque pierde su potencia con el tiempo y exposición solar. b) Formaldehído al 8%.- Puede utilizarlo en sus formas liquida o gaseosa, tanto para DAN como para esterilización química. No es inactivado con facilidad por los materiales orgánicos Un remojo de 24 horas en formaldehído mata todos los microorganismos, incluidas las endosporas bacterianas Puede utilizarlo hasta por 14 días. Reemplácelo antes si se enturbia c) Glutaraldehído.- Se encuentra en forma alcalina, neutra o ácida. Los neutros o alcalinos tienen mayor poder de aniquilación y propiedades anticorrosivas que los ácidos. Se usa más comúnmente, el glutaraldehido al 2%, que debe usarse a temperaturas de 25° C (77° F) Para una DAN eficaz, remojar los instrumentos y demás artículos por 20 minutos. Para su preparación debe seguir las indicaciones del fabricante El formaldehído y el glutaraldehido son tóxicos, siendo el formaldehído de mayor toxicidad. Debe manejarlos con cuidado. Sus vapores son irritantes para la piel, ojos y el tracto respiratorio Úselos solo en una zona ventilada, utilice guantes y limite el tiempo de exposición Todos los equipos ó instrumentos remojados debe enjuagarlos concienzudamente después con agua hervida o estéril Nunca mezcle formaldehído con cloro pues al combinarse forman un gas tóxico (eter bisclorometílico) 36 2.1.20 FLORA MICROBIANA ENDODÓNTICA (MICROBIOTA) En la actualidad se conocen más de 300 especies bacterianas que se hallan normalmente presentes en la cavidad bucal del ser humano. A lo largo de los últimos años se han descrito abundantes especies nuevas, a pesar de lo cual es preciso clasificar de nuevo muchas de las bacterias aisladas de la cavidad bucal. Después de Miller en 1890 cuando asoció la presencia de bacterias con enfermedades pulpares y periapicales, dos estudios han contribuido particularmente al conocimiento actual de la etiología bacteriana de la enfermedad periapical: Kakehashi et al, demostraron en 1965 que cuando las pulpas de ratas gnotobióticas eran perforadas y expuestas a la cavidad oral, las pulpas permanecían vitales y ninguna patología periapical era detectada en la radiografía. Sin embargo, cuando los animales eran expuestos a la flora bacteriana normal de otros animales, la pulpa se necrosaba y se desarrollaban lesiones periapicales. Diez años después, Sundqvist demostró en un estudio sobre dientes humanos necróticos intactos, que la periodontitis apical podía sólo ser detectada en aquellos que contenían bacterias en el conducto radicular, mientras que dientes con conductos necróticos pero estériles no presentaban signos de patosis periapical en la radiografía. 2.1.21 PATOGÉNESIS PULPAR Y PERIAPICAL La colonización es el establecimiento de microorganismos en un huesped cuando las condiciones bioquímicas y físicas son apropiadas para su proliferación. La flora oral es el resultado de una colonización microbiana permanente en una relación simbiótica con el huésped. 37 2.1.21.1 Lipopolisacáridos (LPS).- El LPS liberado desde la membrana externa de las bacterias gramnegativas se denomina endotoxina. La endotoxina tiene varios efectos biológicos, incluyendo la activación del complemento y la reabsorción ósea. 2.1.21.2 Enzimas.- Las bacterias producen enzimas con efectos perjudiciales para el huésped. Neutralizan las inmunoglobulinas y los componentes del complemento. En los abscesos, los neutrófilos experimentan lisis y liberan sus enzimas hacia el medio adyacente para formar un exudado purulento. Este exudado rico en enzimas tiene un efecto adverso sobre los tejidos próximos. 2.1.21.3 Vesículas extracelulares.- Sobre la membrana externa de las bacterias gramnegativas se forman vesículas extracelulares, con una estructura trilaminar similar a la de la bacteria de los que proceden. Puesto que las vesículas poseen los mismos antígenos superficiales que los gérmenes de los que proceden, pueden neutralizar los anticuerpos dirigidos contra el organismo madre y, de esta forma, reducir la respuesta humoral del organismo hospedador a la infección a) Ácidos grasos b) Poliaminas c) Amoníaco d) Sulfuros de hidrógeno 2.1.22 MICROBIOLOGÍA DE LAS ENFERMEDADES PERIAPICALES AGUDAS. Sundqvist comparó el número de diferentes especies de bacterias presentes en el conducto y encontró que la probabilidad de dolor era notablemente incrementada cuando un mínimo de seis cepas diferentes eran encontradas en el mismo conducto. 38 El número de especies también demostró correlación específica con el tamaño de la lesión. Estas observaciones sugieren que el sinergismo bacteriano es un factor de virulencia importante y juega un papel en el desarrollo de los síntomas. Microorganismos en infecciones persistentes a pesar del tratamiento endodóntico. La literatura publicada al respecto es escasa y consiste de reportes casuísticos fundamentalmente. Sin embargo, se sabe que generalmente está presente flora atípica. Bacterias del grupo de Enterococcus faecalis o faecium, bacilos coliformes facultativos gram negativos y Pseudomonas y hasta hongos se han presentado en muchos casos. Candida albicans es el más frecuente pero también han sido aislados Candida glabrata, inconspicua, guilliermondii y Geotrichum candidum. Es posible que los miembros de esta flora atípica estuvieran presentes desde el inicio del tratamiento y ganaron predominancia después, probablemente por un tratamiento incompleto químico-mecánico. Aunque la causa de su aparición no está confirmada, es importante estar al pendiente de su presencia, porque su eliminación, en muchos casos, puede requerir un cambio en las estrategias de rutina. Las asociaciones y centros de control de enfermedades infecciosas han recomendado al personal dental usar procedimientos de control de infecciones con todos los pacientes como si todos los pacientes fueran portadores de una enfermedad infecciosa incurable. Este es el concepto básico para las precauciones universales. Factores que modifican el pronóstico de un conducto infectado: Virulencia del microorganismo Resistencia del huésped Número de microorganismos presentes 39 2.1.23 ANTIBIÓTICOS o ANTIMICROBIANOS. En promedio, una boca adulta contiene más bacterias que toda la población humana en el planeta. En una “boca limpia”, de 1,000 a 100,000 bacterias pertenecientes a más de 300 especies bacterianas pueden adherirse a cada superficie dental. Otros estudios hablan de que la boca es el hábitat de hasta 1,000,000,000,000 microorganismos (10 a la 11 potencia) en 1 mg de placa dentobacteriana. Estos microorganismos pueden ser benignos o causar una variedad de enfermedades infecciosas oportunistas que pueden ir desde una garganta irritada hasta una meningitis. La protección para el desarrollo de enfermedades está generalmente dada por el sistema inmunológico de cada individuo. 2.1.23.1 Qué antibiótico prescribir? Cuando un paciente se presenta al dentista de práctica general con una infección, una serie de procedimientos deben seguirse: a) Revisar la historia clínica médica y dental b) Examen físico completo (incluyendo examinar la ventilación correcta, que es de primera importancia en las infecciones severas) c) Tomar temperatura oral d) Buenas radiografías e) Evaluación de la extensión a los espacios faciales. Si se determina que existe supuración localizada y fluctuante, la incisión y drenaje, extracción del diente o el drenaje por el conducto debe realizarse inmediatamente 40 2.1.23.2 Infecciones incipientes a moderadas (temperatura oral hasta de 38º C) Amoxicilina es la penicilina de elección por tener un espectro más amplio, ser más fácilmente absorbida, mantener niveles sanguíneos constantes y una vida media prolongada. Si no existe mejoría significativa a las 24 o 48 horas, la adición empírica de Metronidazol se considera razonable puesto que las cepas gram negativas resistentes a la enzima betalactamasa pueden estar participando en la infección. (Amoxil, Deniren, Hidramox). Otro antibiótico alternativo para infecciones odontogénicas moderadas en paciente no alérgicos a la penicilina es Amoxicilina combinada con un inhibidor de la betalactamasa, tal como ac. Clavulánico (Amoxiclav, Augmentin). Muchos dentistas se preocupan por las reacciones alérgicas potenciales con el uso de la penicilina. A pesar de que siempre existe el riesgo con cualquier medicamento, es conveniente recordar que sólo una pequeña cantidad de pacientes (3 al 6% con uso del medicamento por vía oral) reaccionará desfavorablemente a la medicina. Se ha sugerido substituir la penicilina por Clindamicina en estos casos o cuando la Penicilina ha resultado ineficaz. A bajas dosis es bacteriostático y se vuelve bactericida en dosis más elevadas. Tiene una excelente acción aeróbica y anaeróbica, pero algunos autores piensan que la Clindamicina debe ser reservada para infecciones muy severas debido a que tiene algunos riesgos importantes (colitis pseudomembranosa por sobre crecimiento del Clostridium difficile) (Dalacín C, Clindex ). 2.1.23.3 Infecciones severas odontogénicas (temperatura oral de más de 38ºC) La clindamicina es el antibiótico de elección (Dalacín C). a) Ventajas de la clindamicina: Tiene un espectro anaeróbico muy amplio Las bacterias patógenas susceptibles están alrededor del 46.5% 41 La resistencia es rara El 90% de la clindamicina oral se absorbe alcanzando niveles de 3.6 ug/ml de sangre después de 30 min. Su vida media es de 2.3 a 3.4 horas. Es soluble en agua. Es fácil su penetración a tejido óseo. Su ingestión con alimentos no evita su absorción aunque la retarda ligeramente. b) Desventajas de la clindamicina En el 2 al 20% de los casos puede provocar Colitis pseudomembranosa que puede comenzar hasta 14 días después de la administración de clindamicina y algunas veces puede ser fatal. Su mejor tratamiento es con Vancomicina (Vancocín C.P.) Cuatro cápsulas diariamente facilitan el olvido de toma del paciente. c) Otros antibióticos: A pesar de que por muchos años se ha utilizado la eritromicina para uso profiláctico, en el caso de tratar infecciones ya establecidas este antibiótico da resultados muy pobres. Son necesarias dosis muy altas que producen nausea y vómito en muchos pacientes. Algunas formas nuevas de eritromicina (claritromicina, azitromicina, diritromicina) prometen tener uso terapéutico pero todavía tienen muy pocos estudios para ser recomendados ampliamente. Cefalosporinas de la primera generación es el antibiótico menos indicado para la terapia inicial porque tienen un espectro más amplio y no son tan efectivas como la penicilina o clindamicina sobre las cepas causales de las infecciones dentarias. Los pacientes alérgicos a la penicilina también 42 reaccionan desfavorablemente a las cefalosporinas. Las cefalosporinas de la segunda y tercera generación estarán indicadas sólo cuando el estudio de antibiograma las indique. Las tetraciclinas son drogas bacteriostáticas y existen ya números importantes de cepas resistentes en la flora bucal. Las fluoroquinolonas son inadecuadas para su uso en infecciones orales porque tienen una acción muy pobre en contra de los estreptococos y la mayoría de anaerobios. 2.2 ELABORACION DE HIPOTESIS Que al analizar la Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad de Guayaquil nos permitirá conocer tanto a los estudiantes como docentes cuán importante es el conocimiento de la mejor técnica a emplear para establecer un campo estéril libre de infecciones brindándonos seguridad en todo aspecto y así no podernos ver afectados tanto el operador como el paciente. 2.3 IDENTIFICACION DE LAS VARIABLES INDEPENDIENTE: Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad Estatal de Guayaquil. DEPENDIENTE: Nos podemos ver afectados tanto el operador como el paciente 43 2.4 OPERALIZACIONES DE LAS VARIABLES VARIABLES VARIABLES INTERMEDIAS INDICADORES MÉTO-DOS Malo Calidad del método Regular de esterilización Bueno Excelente INDEPENDIENTE: Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la 100% Efectividad del 90-60% método 50% Facultad Piloto de Odontología de la Universidad Estatal de Bajo Guayaquil. Costo Medio Alto Científico Lógico Bibliográfico Complejo Cuasi experimental 30 a 60 Minutos Tiempo DEPENDIENTE: Nos podemos ver afectados tanto el operador como el Cualitativo Operación correcta del equipo esterilización. de Parcial Total paciente. 44 CAPITULO III METODOLOGIA 3.1. LUGAR DE LA INVESTIGACION En la clínica de la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad de Guayaquil. 3.2. PERIODO DE LA INVESTIGACION Se realizó en el periodo 2011-2012 3.3. RECURSOS EMPLEADOS 3.3.1 RECURSOS HUMANOS Paciente: Betty Guerrero Alumna: Gabriela Decire Villafuerte Abad Tutor: Dr. Luis Játiva 3.3.2 RECURSOS MATERIALES Gorro, mascarilla, gafas protectoras operador, gafas protectoras paciente, guantes, campo operatorio, campo para el paciente, radiografías, pinzas de revelado, líquidos reveladores, regla milimetrada, limas, hipoclorito, suero fisiológico, arco de yum, dique de goma , perforador de diques, porta clams, clanes, jeringas de 3cm, algodón, gasa, sustancia medicamentosa, conos de papel, conos de gutapercha, mechero, condensador, espaciadores. 3.4 UNIVERSO Y MUESTRA Esta investigación es de tipo descriptiva y explicativa por lo cual no se desarrolla una muestra, ni existe población no se experimentó alguno sino que se describirá la Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad Estatal de Guayaquil. 45 3.5 TIPOS DE INVESTIGACION Esta investigación es de tipo cualitativa ya que los resultados de la misma permitirán se describa la Bioseguridad en el tratamiento endodóntico realizado en la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad Estatal de Guayaquil. 3.6 DISEÑO DE LA INVESTIGACION Es no esta investigación es experimental por lo tanto es transeccional de tipo descriptivo que se dan en uno o más grupos. 46 CAPITULO IV CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 4.1 CONCLUSIONES La bioseguridad y sus normas deben ser respetadas por todos en pos de la protección de su paciente, sus colaboradores y su propia salud, de modo de interrumpir la cadena de transmisión del agente infeccioso y de la enfermedad misma. Es decir que nuestros pacientes se hayan expuestos a una gran variedad de microorganismos que si no tenemos un campo estéril libre de infección y no cumplimos los pasos de bioseguridad nos podemos ver afectado tanto el operador como el paciente. Es recomendable que los odontólogos traten de apegarse a estas recomendaciones para proteger a sus pacientes, el personal y así mismos, del riesgo de contaminación cruzada. Las recomendaciones de expertos federales, estatales y locales pueden cambiar con frecuencia; por tanto es preciso mantenerse constantemente actualizado. 4.2 RECOMENDACIONES Dado los criterios de investigación todos los métodos de esterilización son efectivos teniendo en cuenta que el autoclave es el principal método en cuanto libre de microorganismos. Esto no descarta que los otros métodos no puedan ser utilizados puesto que todos tienen los mismos beneficios. Los resultados que se esperan a futuro son con la finalidad de manejar las normas y procedimientos adecuados para mantener la bioseguridad y asepsia en el campo clínico-odontológico 47 BIBLIOGRAFIA 1. Carlos Canales Capítulo 15 Asepsia En Endodoncia Pág. 714 – 722 2. Carlos Estrada Ciencia Endodóntica 3. John Ide Ingle Endodoncia 4ta Edición 4. Mondragón Capitulo 7 Pag 67 5. Stephen Cohen- Richard C. Burns Vias de la Pulpa Capitulo 12 Pag. 439 6. Waltón-Torabinejad Endodoncia Principios Y Practica Capitulo 16 Pag. 297 – 298 7. Wineir Capitulo 10 Pag. 101 – 107 8. Frank, A., Et Al. Endodoncia Fundamentos De La Clínica Práctica Y Quirúrgica. Odontológica. Labor. Barcelona 1983. Págs. 77-78 9. Grossman, L. Endodontic Practice. 11a. Edición. Lea & Febiger. Philadelphia. 1988. Pág. 237 10. Guldener, P., Langeland, K. Endodoncia. Diagnóstico Y Tratamiento. Springer.-Cuellar. México. 1995. Pág. 128 11. Hargreaves, Kenneth M & Goodis, Harold E. Seltzer And Bender's Dental Pulp. 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